常見(jiàn)的細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法包括化學(xué)法、物理法和病毒載體法[1]。

化學(xué)法

化學(xué)法包括脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法、DEAE-葡聚糖法、陽(yáng)離子聚合物轉(zhuǎn)染法等。其原理是利用轉(zhuǎn)染試劑（如陽(yáng)離子脂質(zhì)體、DEAE-葡聚糖、陽(yáng)離子聚合物等）與帶負(fù)電荷的核酸形成復(fù)合物，并通過(guò)內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞，從而實(shí)現(xiàn)細(xì)胞轉(zhuǎn)染?；瘜W(xué)轉(zhuǎn)染法具有操作簡(jiǎn)便、適用范圍廣等優(yōu)點(diǎn)，但也存在一定的細(xì)胞毒性[2-4]。因此，針對(duì)不同的細(xì)胞類型，選擇適合的轉(zhuǎn)染試劑對(duì)轉(zhuǎn)染效果具有決定性影響。

物理法

物理法包括顯微注射法、電穿孔法等[5]。其中，電穿孔方法是利用高壓電流脈沖在細(xì)胞膜上形成瞬時(shí)微孔，使核酸等生物分子進(jìn)入細(xì)胞。該方法轉(zhuǎn)染效率高，但對(duì)細(xì)胞的損傷較大，細(xì)胞致死率高。

病毒載體法

病毒載體法，如慢病毒、腺病毒和逆轉(zhuǎn)錄病毒。尤其是，慢病毒和逆轉(zhuǎn)錄病毒可以將基因組整合到宿主細(xì)胞中，實(shí)現(xiàn)穩(wěn)定且長(zhǎng)期的基因表達(dá)[6]。然而，病毒載體法存在細(xì)胞毒性和潛在的生物安全風(fēng)險(xiǎn)，需要嚴(yán)格的操作規(guī)范。

根據(jù)細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇合適的轉(zhuǎn)染方法至關(guān)重要。對(duì)于大多數(shù)貼壁細(xì)胞，脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染是一種常用且較為溫和的方法；而對(duì)于原代細(xì)胞或難轉(zhuǎn)染的懸浮細(xì)胞，電穿孔或病毒載體轉(zhuǎn)染可能更為合適。

二、優(yōu)化細(xì)胞密度

細(xì)胞密度是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素之一。

一般來(lái)說(shuō)，貼壁細(xì)胞在70%-90%匯合度時(shí)轉(zhuǎn)染效果較好。然而，對(duì)于某些特殊的細(xì)胞系或轉(zhuǎn)染方法，可能需要調(diào)整細(xì)胞密度。建議在轉(zhuǎn)染前一天設(shè)置多個(gè)細(xì)胞密度梯度進(jìn)行接種，以便在轉(zhuǎn)染細(xì)胞時(shí)達(dá)到不同的匯合度。轉(zhuǎn)染后，通過(guò)實(shí)驗(yàn)評(píng)估各組的轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞狀態(tài)，以確定最佳的細(xì)胞密度范圍。

三、優(yōu)化待轉(zhuǎn)物濃度與轉(zhuǎn)染試劑比例

以脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染為例，脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑和待轉(zhuǎn)物的比例不同，對(duì)轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞毒性有顯著影響。

為了優(yōu)化轉(zhuǎn)染效果，建議在細(xì)胞消化接種到孔板時(shí)，每孔加入等量的細(xì)胞懸液，以確保轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞密度的一致性。根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑說(shuō)明書(shū)推薦比例，設(shè)置梯度，如轉(zhuǎn)染試劑：待轉(zhuǎn)物比例分別為1:1、2:1、3:1，制備不同濃度的轉(zhuǎn)染復(fù)合物，分別加入到相應(yīng)的孔中，每個(gè)比例設(shè)置3個(gè)重復(fù)孔以確保數(shù)據(jù)的可靠性。將培養(yǎng)板置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育一定時(shí)間后，通過(guò)熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞儀檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率，并用CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞存活率。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，選擇轉(zhuǎn)染效率高且細(xì)胞毒性低的最佳比例，用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

四、優(yōu)化孵育時(shí)間

轉(zhuǎn)染后細(xì)胞與轉(zhuǎn)染復(fù)合物的孵育時(shí)間是影響轉(zhuǎn)染效果的重要因素之一。

孵育時(shí)間過(guò)短可能導(dǎo)致轉(zhuǎn)染復(fù)合物未能充分進(jìn)入細(xì)胞，導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低；而孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)則可能增加轉(zhuǎn)染試劑對(duì)細(xì)胞的毒性，影響細(xì)胞狀態(tài)。為了優(yōu)化轉(zhuǎn)染效果，建議在轉(zhuǎn)染后設(shè)置多個(gè)時(shí)間點(diǎn)（如6 h、12 h、24 h等）更換培養(yǎng)基，并觀察轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞毒性變化。對(duì)于一些對(duì)轉(zhuǎn)染試劑較為敏感的細(xì)胞，縮短孵育時(shí)間可能有助于降低細(xì)胞損傷，同時(shí)保持較高的轉(zhuǎn)染效率。通過(guò)實(shí)驗(yàn)確定最佳孵育時(shí)間，以實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)染效果和細(xì)胞活性的平衡。在完成一系列優(yōu)化實(shí)驗(yàn)后，需對(duì)結(jié)果進(jìn)行系統(tǒng)總結(jié)。對(duì)比不同條件下轉(zhuǎn)染效率和細(xì)胞存活率的數(shù)據(jù)，分析各參數(shù)對(duì)轉(zhuǎn)染效果的影響。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，總結(jié)出適用于特定細(xì)胞系或?qū)嶒?yàn)體系的轉(zhuǎn)染條件優(yōu)化策略，為后續(xù)實(shí)驗(yàn)提供參考依據(jù)。

案例分享：

Hep G2細(xì)胞轉(zhuǎn)染條件優(yōu)化